크로마토그래피 주사 바늘은 작지만 필수 불가결하며, 주사 바늘은 샘플 및 분석 기기 채널에 연결되며, 주사 바늘을 사용하면 샘플이 검출기를 통해 크로마토그래피 컬럼에 들어가 연속 스펙트럼 분석을 할 수 있으므로 주사 바늘의 유지 관리 및 청소는 분석가가 매일의 초점에주의를 기울여야하며 그렇지 않으면 작업의 효율성에 영향을 미칠뿐만 아니라 기기에도 손상을 줄 수 있으므로이 기사에서는 작은 지식의 주사 바늘에 대해 소개합니다.

 

샘플링 바늘 분류

피드 바늘 바늘의 모양에 따라 둥근 척추 모양의 바늘 피드 바늘, 경 사진 바늘 피드 바늘, 납작한 머리 피드 바늘로 나눌 수 있습니다.

스페이서 샘플링에 사용되는 원통형 바늘은 스페이서의 손상을 줄이고 주로 자동 샘플러에 사용되는 여러 주입을 견딜 수 있습니다. 샘플링 스페이서에서 사용할 수있는 경 사진 바늘, 샘플 작업을 공급하기 쉬운 26s-22 바늘이 샘플링 스페이서의 가스 크로마토 그래피에 사용하기에 가장 적합한 바늘; 주로 고성능 액체 크로마토 그래프, 주입 밸브 및 샘플 흡입 파이프에 사용되는 플랫 팁 바늘입니다. 플랫 팁 바늘은 주로 HPLC의 주입 밸브와 시료 흡입관에 사용됩니다.

샘플링 방법

공급 방법에 따라 자동 주입 바늘과 수동 주입 바늘로 나눌 수 있습니다. 가스 크로마토 그래피의 바늘에 따라 분석 요구 사항이 다른 액체 크로마토 그래피 액체는 기체 상 주입 바늘과 액체 상 주입 바늘로 나눌 수 있습니다. 가스 크로마토그래피 주입 바늘은 일반적으로 0.2-1ul의 가장 일반적인 주입량인 조금 더 적게 공급해야 하므로 해당 주입 바늘의 선택은 일반적으로 10-25ul입니다. 바늘 콘 유형에 대한 바늘 선택은 샘플 작업을 쉽게 공급할 수 있습니다;

대조적으로, 액체 크로마토그래피 주입량은 일반적으로 0.5-20UL의 일반적인 주입량이 더 크므로 바늘의 상대적 부피도 일반적으로 25-100UL로 더 크고 바늘 끝은 고정자의 긁힘을 방지하기 위해 평평합니다.

크로마토 그래피 분석에서 마이크로 샘플링 바늘에 가장 일반적으로 사용되는 주사 바늘은 특히 가스 크로마토 그래피, 분석용 액체 크로마토 그래피 액체에 적합합니다. 총 용량 오차 ± 5%. 기밀성은 0.2mpa를 견딜 수 있습니다. 액체 저장소가없는 인젝터와 액체 저장소가있는 두 종류의 인젝터로 나뉩니다. 비저장 액체 마이크로 샘플러의 사양 범위는 0.5μL-5μL이고 저장 액체 마이크로 샘플러의 사양 범위는 10μL-100μL입니다. 마이크로 샘플링 바늘은 일종의 없어서는 안될 정밀 기기입니다.

주사 바늘 사용

1, 사용하기 전에 피더를 확인하고 배럴에 균열이 있는지 확인하고 바늘 끝이 털이 있는지 확인하십시오. 2, 피더의 잔류 샘플을 제외하고 용매로 피더를 5-20 회 세척하고 처음 2-3 회 폐액을 버립니다. 3, 피더의 기포를 제외하고 바늘 끝을 용매에 담그고 반복적으로 샘플을 뽑습니다. 샘플이 제외되면 피더의 기포는 튜브의 수직 변화에 따라 변경 될 수 있습니다 .4. 피더를 사용할 때는 먼저 액체로 가득 찬 피더를 흡입 한 다음 원하는 양의 샘플로 액체를 제외하십시오.

플런저 유지 관리

 

1, 플런저를 강제 할 수 없습니다. 2, 바늘이 막히면 고압으로 인해 플런저 배럴이 파열 될 수 있기 때문에 플런저를 강제 할 수 없습니다. 3, 표준 샘플러 플런저는 교체 할 수 없으며 각 플런저는 부착 층의 해당 샘플러에 적합합니다. 4, 피더가 가능한 한 건조하면 플런저를 펌핑하지 마십시오. 5, 버가없는 티슈로 플런저를 청소하고 구부리지 마십시오. 6, 플런저를 사용하여 플런저를 청소할 수 있습니다. 7, 플런저는 구부리지 말고 플런저를 청소하는 데 사용해야합니다. 8, 플런저는 플런저를 청소하는 데 사용할 수 없습니다. 9, 플런저는 플런저를 청소하는 데 사용할 수 없습니다.

바늘 관리

1, 중간에서 점도가 높은 샘플은 사용하기 전에 희석하거나 주사 바늘의 큰 내경을 선택해야합니다. 2, 튜브 와이어 또는 튜브 코어 바늘, 핀셋, 바늘 벽을 청소하는 데 사용되는 표면 활성 물질을 통해 도구를 청소할 때 청소 바늘을 사용해야합니다. 3, 열 세척, 특히 미량 분석, 높은 끓는점 및 점성 물질을 위해 바늘의 유기 잔류 물을 제거하는 열 세척. 몇 분의 열 세척 후 바늘 청소 도구를 다시 사용할 수 있습니다.

바늘 청소

1, 유기 용제를 사용하여 바늘의 내벽을 청소할 수 있으며, 청소할 때 바늘 푸셔가 부드럽게 움직일 수 있는지 확인하도록주의하십시오; 2, 바늘 푸셔가 부드럽게 움직이지 않으면 푸셔를 제거 할 수 있습니다. 유기 용제에 적신 부드러운 천을 사용하여 깨끗하게 닦는 것이 좋습니다. 3, 바늘 푸셔에 몇 번의 흡입 후 저항이 매우 빠르게 증가하면, 즉 청소 과정을 반복해야하는 작은 먼지가 여전히 존재하는 경우 유기 용제 흡입의 사용을 반복하십시오. 4, 바늘 푸셔가 유창하고 부드럽게 움직일 수 있으면 바늘이 막혔는지 확인하십시오. 유기 용매로 바늘을 헹구는 것을 반복하여 바늘에서 밀려 나오는 샘플의 모양을 확인합니다. 5, 바늘이 정상이면 샘플이 직선으로 흐르고 바늘이 막히면 샘플이 미세한 안개 형태로 방향 또는 각도에서 분사됩니다. 용매가 때때로 직선으로 흐르더라도 흐름이 정상보다 나은지 주의 깊게 확인하세요(막히지 않은 새 바늘과 흐름을 비교하세요). 6. 바늘이 막히면 분석의 재현성이 떨어질 수 있으므로 바늘 관리가 필수적입니다. 예를 들어 금속 와이어 등으로 바늘의 막힌 부분을 제거합니다. 바늘은 시료가 정상적으로 흐르는 경우에만 사용해야 합니다. 피펫을 사용하여 흡인하거나 주사기 클리너를 사용하면 주사기에서 오염 물질을 제거하는 데 효과적일 수 있습니다.

주삿바늘 사용 시 주의사항

손은 주사기 바늘을 가져 가지 말고 샘플 부품을 가지고, 기포가 없어야하며, 샘플을 빠는 것은 느리고 빠른 배출 후 느린 흡입, 몇 번 반복, 10μl 주사기 금속 바늘 부분의 부피 0의.6 μl, 기포가 보이지 않을 수 있습니다, 더 많은 흡입 1-2 μl 주사기의 주사기 끝으로 상단의 상부 기포를 향해 주사기 끝으로 더 흡입 한 다음 바늘대를 밀어 기포를 제외하고 (코어 주사기 평평한 느낌으로 10 μl 주사기를 참조) 샘플 속도가 빨라야합니다 (그러나 빠르기는 쉽지 않음), 샘플이 동일한 속도를 유지할 때마다 바늘 끝을 기화 챔버의 중앙으로 주사하여 샘플 주입을 시작하십시오.

주사 바늘에 대해 자주 묻는 질문

1、주사 바늘이 구부러지는 것을 방지하는 방법은 무엇입니까?

답변: 많은 초보 크로마토그래퍼가 주사기 바늘과 주사기 막대를 구부리는 경우가 많은데, 그 이유는 다음과 같습니다:

(1) 입구 포트가 너무 꽉 조여져 실리카겔 개스킷의 팽창 후 온도가 상승하면 기화 챔버의 온도가 더 단단해질 때 실온이 너무 꽉 조여져 주사기를 묶기가 어렵습니다.

(2) 바늘의 위치가 시료 주입구의 금속 부분을 찾기에 좋지 않습니다.

(3) 시료를 공급할 때 주사기 막대가 너무 강하여 피더 랙으로 가져온 크로마토그래피, 피더 랙으로 시료를 공급하면 주사기 막대가 구부러지지 않습니다.

(4) 주사기 내벽이 오염되어 주사할 때 바늘대가 밀려서 구부러집니다. 일정 기간의 주사기는 주사기의 작은 검은 색 부분의 상단 근처의 주사기에서 발견되며 이번에는 흡입 주사가 격렬하게 느껴집니다. 청소 방법은 바늘 바에서 빼내고 약간의 물을 주입하고 바늘 바를 반복적으로 밀고 당기는 오염 위치에 삽입하고 오염 물질이 제거 될 때까지 물에 주입 할 수 없으며 주사기 내부의 물이 흐려지고 바늘 바를 여과지로 꺼내서 닦은 다음 알코올로 몇 번 씻을 수 있음을 알 수 있습니다. 용매 용해 고체 시료에 대한 시료 분석, 용매로 주사기를 세척하기 위해 제 시간에 시료에 용매를 주입합니다.

(5) 샘플에 안정적이어야하며, 샘플에 숙련 된 자연 금식을하는 한 주사기를 구부릴 수 있어야합니다.

2. 바늘 기술 팁으로?

(1) 샘플 패드에 바늘이 더 단단하게 느껴지면 바늘을 빨리 당긴 후 샘플을 주입하고, 샘플 패드에 바늘이 느슨하게 느껴지면 바늘을 느리게 당긴 후 샘플을 주입합니다.

(2) 즉시 빼냅니다. 피크 모양이 좋은지 확인하기 위해 샘플 부피가 작아야 합니다. 샘플러가 기포, 느린 흡입, 빠른 타격, 기포를 남기지 않도록 주의하세요;

(3) 샘플 전에 몇 번 더 흡입하여 기포를 배출하고 샘플을 빠르게 안팎으로 빠르게 흡입하고 바늘을 가능한 한 멀리 이동하여 위치를 고정하기 위해 시작 시간 후 샘플의 경우 시작에 따라 시간 간격의 끝을 묶을 때마다 일관성을 유지할 수있는 한 특별히 빠를 필요는 없습니다;

(4) 일반적으로 즉시 꺼내려면 샘플 패드에 바늘이 다른 샘플의 분석에 따라 일부 공기 불순물의 도입의 밀봉을 감소시킬 것이라는 말이 있습니다, 느린 샘플링은 또한 꼬리 드래그를 일으킬 것입니다, 애질런트 엔지니어에 따르면 동일한 배치의 샘플 외에도 동일한 사람을 입력하여 다른 사람들의 샘플링 재현성의 샘플링이 샘플링 오류에 큰 차이가 있는지 확인하는 것이 가장 좋으며, 상대적으로 좋은 경우에도 5% 이하의 오류율을 보장 할 수 있으며 원래 샘플링 바늘은 매우 비싸므로 조심하십시오. 또한 주입 후 즉시 샘플을 꺼낼 수 있다는 말은 주입기에서 교반의 역할과 유사한 역할을하여 샘플 기화를보다 균일하게 만들고 션트 차별 효과를 줄일 수 있다는 말도 있습니다.

(5) 측정할 용액은 용매를 휘발시켜 두 주사 사이에 용액의 농도가 변하지 않도록 밀봉된 주사 병에 담아야 합니다(일부는 빛이 닿지 않는 곳에 보관해야 함).

(6) 시료를 주입하기 전에 주사 바늘을 용매로 3회 정도 세척하여 마지막 주사의 잔류물이 없는지 확인해야 합니다. 시료의 농도와 측정할 용액의 농도가 동일한지 확인하기 위해 주사 바늘을 측정할 용액으로 약 세 번 정도 세척합니다.

(7) 실제 주입량과 표시된 값 사이의 편차를 피하기 위해 주사 바늘의 기포를 구동하는 데 주의합니다. 일관성 있고 빠른 샘플링 기술.

(8) 고무 링은 노화를 방지하기 위해 부지런히 점검해야 합니다.

(9) 바늘이 샘플러 카테터로 들어가는 과정에서 바늘을 피하기 위해 샘플러의 구멍 중앙과 정렬되어야 합니다.

3. 바늘에 액상 실험을 하면 수렴성이 산화되어 샘플링에 영향을 미치고, 어떻게 처리합니까?

(1) 대부분의 사람들은 메탄올 헹굼, 초음파 20 분을 권장 한 다음 순수한 메탄올 초음파 시도를 사용하고 일반적으로 물 상쾌 후 메탄올을 사용한 다음 순수한 메탄올로 씻을 것을 권장하므로 바늘이 일반적으로 수렴성이 없도록 기름진 물질 층 내부에 비눗물로 씻는 데 사용했습니다.

(2) 샘플이 때때로 메탄올과 물에 용해 된 순수한 메탄올이 아니기 때문에 묽은 질산 세척으로 녹에 대한 공급 바늘의 철 부분이 녹을 씻어 낼 수 있으므로 5% 묽은 질산 세척을 사용할 수도 있습니다.