{"id":4429,"date":"2021-03-09T14:01:53","date_gmt":"2021-03-09T14:01:53","guid":{"rendered":"https:\/\/longchangchemical.com\/?p=4429"},"modified":"2026-04-28T10:41:48","modified_gmt":"2026-04-28T10:41:48","slug":"biotransformation-of-saponins","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/longchangchemical.com\/de\/biotransformation-of-saponins\/","title":{"rendered":"Biotransformation von Saponinen"},"content":{"rendered":"

Saponine sind eine Klasse von Glykosiden, bei denen die Aglykone Triterpen- oder Steranverbindungen sind. Sie sind einer der wirksamen Bestandteile vieler chinesischer pflanzlicher Arzneimittel wie Ginseng, S\u00fc\u00dfholz und Yamswurzel (die Hauptstruktur der Saponine ist in Abbildung 1 dargestellt). St\u00e4rkung der Immunit\u00e4t und anderer Funktionen. In der Literatur gibt es viele Berichte \u00fcber die Biotransformation von Ginsenosiden. Gegenw\u00e4rtig sind mehr als 150 Arten von Ginsenosiden getrennt und identifiziert worden. Der Gehalt der Ginsenoside Rb1, Rb2, Rc, Rd, Re und Rg1 betr\u00e4gt bis zu 80%, w\u00e4hrend der Gehalt der Ginsenoside Rg3, Rh2, F2 und Compound K (C-K) und anderer seltener Saponine gering oder gar nicht vorhanden ist. Studien haben gezeigt, dass einige seltene Saponine gute pharmakologische Aktivit\u00e4ten haben. Aufgrund ihres geringen Gehalts sind die Herstellung und Produktion jedoch eingeschr\u00e4nkt. Die gleiche Art von Ginsenosid hat das gleiche Aglykon, aber die Zuckerkette ist unterschiedlich. Seltene Ginsenoside und der h\u00f6here Gehalt der gleichen Saponinart unterscheiden sich oft nur durch 2 bis 3 Zuckergruppen. Daher kann dieselbe Art von aktivem seltenem Saponin durch enzymatische Hydrolyse von Saponin mit hohem Gehalt hergestellt werden.<\/h4>\n\n\n

Quick answer:<\/strong> A practical enzyme or food-ingredient decision starts with the process target, then checks activity, application window, sensory impact, and batch-to-batch consistency before scale-up.<\/p>\n\n\n\n\n\r\n\r\n\r\n

\"\"<\/figure>\r\n\r\n\r\n\r\n

Abbildung 1. Struktur der wichtigsten Saponine<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n

Verschiedene Glykosidhydrolasen haben unterschiedliche Selektivit\u00e4ten, und auch die Wege zur Hydrolyse von Ginsenosiden sind unterschiedlich. Wie in Tabelle 1 dargestellt, k\u00f6nnen verschiedene Glykosidhydrolasen zur Herstellung verschiedener seltener Ginsenoside verwendet werden. Ginsenosid Rd kann durch Hydrolyse der \u00e4u\u00dferen C-20-Zuckergruppe der Ginsenoside Rb1, Rb2, Rb3 und Rc hergestellt werden. Die aus der chinesischen wei\u00dfen Jadeschnecke und Thermus caldophilus isolierte und gereinigte \u03b2-Glucosidase kann das Ginsenosid Rb1 in Rd umwandeln. Kim et al. gewannen sie aus Bodenmikroorganismen mit Hilfe der molekularen Klonierungstechnologie, um Ginsenosid Rb1 umzuwandeln, das die rekombinante Glykosidhydrolase von Rd ist. Anschlie\u00dfend klonierten die Forscher Glucosidase aus Thermotoga thermarum und Bifidobacterium longum H-1, was die Effizienz der Transformation und der Herstellung von Ginsenosid Rd verbesserte. Die aus Flavobacterium johnsoniae und Thermus thermophilus durch rekombinante Technologie gewonnene Glucosidase kann nicht nur das Ginsenosid Rb1 in Rd umwandeln, sondern auch die C-20-Zuckerkette des Gypenosids XVII (G17) hydrolysieren, um das Ginsenosid F2 herzustellen. Zus\u00e4tzlich zur Glucosidase wurde \u03b1-L-Arabinofuranosid-Hydrolase, die Ginsenosid Rc in Rd umwandeln kann, aus Ginsengwurzel und Leuconostoc sp. gewonnen. \u0391-L-Arabinofuranosid-Hydrolase und \u03b1-L-Arabinopyranosid-Hydrolase werden aus Bifidobacterium breve und Bifidobacterium longum gewonnen, die Ginsenosid Rc und Rb2 in Rd umwandeln k\u00f6nnen. In der Literatur wurde berichtet, dass die \u03b1-L-Arabinofuranosid-Hydrolase in Caldicellulosiruptor saccharolyticus und Rhodanobacter ginsenosidimutans nicht nur das Ginsenosid Rc zu Rd hydrolysieren, sondern auch die Verbindung Mc1 (C-Mc1) in F2 umwandeln kann. Die von Yu et al. aus Aspergillus isolierte und gereinigte Glykosidhydrolase kann alle Ginsenoside Rb1, Rb2, Rb3 und Rc in Rd umwandeln. Einige Glykosidhydrolasen k\u00f6nnen die Zuckerketten an der C-20-Position in Molek\u00fclen wie den glykolartigen Ginsenosiden Rb1, Rb2, Rb3, Rc und Rd vollst\u00e4ndig hydrolysieren, um das Ginsenosid Rg3 zu erzeugen, das die Produktion von Rg3 in gro\u00dfem Ma\u00dfstab erm\u00f6glicht und als Antitumormittel entwickelt wird. Die Glucosidase in Paecilomyces bainier und Microbacterium esteraromaticum kann das Ginsenosid Rb1 direkt zu Rg3 hydrolysieren, w\u00e4hrend die aus Microbacterium esteraromaticum isolierte und gereinigte Glucosidase das Ginsenosid Rb2 zu Rg3 hydrolysieren kann. Die rekombinante Glykosidhydrolase, die mit Hilfe der molekularen Klonierungstechnologie aus Pseudonocardia geklont wurde, kann die Ginsenoside Rb1, Rb3 und Rd zu Rg3 umwandeln. In \u00e4hnlicher Weise kann eine Reihe aktiver seltener Ginsenoside durch Hydrolyse der Zuckergruppe an Position C-3 in Ginsenosiden hergestellt werden. Die rekombinante Glucosidase, die aus Sphingomonas und Sphingopyxis alaskensis geklont wurde, kann die Glukose au\u00dferhalb der Zuckerkette an der Position C-3 in den Ginsenosidmolek\u00fclen Rb1, Rb2, Rc, Rd und Rg3 hydrolysieren und G17, Compound O (CO) und C-Mc1, F2 und Rh2 herstellen. Einige Glycosidasen k\u00f6nnen die innere Glucosylgruppe an der C-3-Position direkt hydrolysieren. Beispielsweise kann die Glucosidase aus Terrabacter ginsenosidimutans und Esteya vermicola die Zuckerkette an der C-3-Position der Ginsenosidmolek\u00fcle Rb1, Rb2, Rb3, Rc und Rd hydrolysieren, um das entsprechende Saponin LXXV (G75), Verbindung Y (C-Y), Verbindung Mx (C-Mx), Verbindung Mc (C-Mc) und C-K zu bilden. Dar\u00fcber hinaus k\u00f6nnen einige Glykosidhydrolasen gleichzeitig die C-20- und C-3-Zuckergruppen in Ginsenosiden vom Glykol-Typ hydrolysieren. Die rekombinante Glucosidase, die aus Arthrobacter chlorophenolicus geklont wurde, kann die Ginsenoside Rb1, Rb2 und Rc in F2 umwandeln. Die Glykosidhydrolase in Fusobacterium K60, den endophytischen Pilzen GE 17-18, Sulfolobus acidocaldarius, Aspergillus niger und Microbacteriu esteraromaticum kann das Ginsenosid Rb1 hydrolysieren, um C-K herzustellen.<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n

Tabelle 1. Biotransformation von Ginsenosiden durch Glycosidase<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n
\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n
Produkt<\/td>\r\nSubstrat<\/td>\r\nReaktion<\/td>\r\nOrganismus<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nChina wei\u00dfe Jadeschnecke<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nThermus<\/em>\u00a0<\/em>Caldophilus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nUngez\u00fcchtete Bakterien<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nThermotoga<\/em>\u00a0<\/em>thermarum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nBifidobacterium<\/em>\u00a0<\/em>longum<\/em>\u00a0<\/em>H-1<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nFlavobacterium<\/em>\u00a0<\/em>johnsoniae<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nThermus<\/em>\u00a0<\/em>thermophilus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nPenicillium<\/em>\u00a0<\/em>oxalicum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nCladosporium<\/em>\u00a0<\/em>fulvum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nPanax<\/em>\u00a0<\/em>Ginseng<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nLeuconostoc<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nBifidobacterium<\/em>\u00a0<\/em>breve<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nBifidobacterium<\/em>\u00a0<\/em>longum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nCaldicellulosiruptor<\/em>\u00a0<\/em>saccharolyticus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nRhodanobacter<\/em>\u00a0<\/em>Ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb2<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinopyranosidase<\/td>\r\nBifidobacterium<\/em>\u00a0<\/em>breve<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb2<\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinopyranosidase<\/td>\r\nBifidobacterium<\/em>\u00a0<\/em>longum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rd<\/td>\r\nRb1\/Rb2\/Rb3\/Rc<\/td>\r\nGlykosidase<\/td>\r\nAspergillus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg3<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nPaecilomyces<\/em>\u00a0<\/em>bainier<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg3<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nMikrobakterium<\/em>\u00a0<\/em>esteraromaticum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg3<\/td>\r\nRb2<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nMikrobakterium<\/em>\u00a0<\/em>esteraromaticum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg3<\/td>\r\nRb1\/Rb3\/Rd<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nPseudonokardie<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
G17<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nSphingomonas<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
G17<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nSphingopyxis<\/em>\u00a0<\/em>alaskensis<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
G17<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nCellulosimicrobium<\/em>\u00a0<\/em>Zellulose<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
G75<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nTerrabacter<\/em>\u00a0<\/em>Ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
G75<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nEsteya<\/em>\u00a0<\/em>vermicola<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F2<\/td>\r\nG17<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nFlavobacterium<\/em>\u00a0<\/em>johnsoniae<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F2<\/td>\r\nG17<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nThermus<\/em>\u00a0<\/em>thermophilus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F2<\/td>\r\nC-Mc1<\/sub><\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nCaldicellulosiruptor<\/em>\u00a0<\/em>saccharolyticus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F2<\/td>\r\nC-Mc1<\/sub><\/td>\r\n\u03b1-L-Arabinofuranosidase<\/td>\r\nRhodanobacter<\/em>\u00a0<\/em>Ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F2<\/td>\r\nRd<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nCellulosimicrobium<\/em>\u00a0<\/em>Zellulose<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F2<\/td>\r\nRb1\/Rb2\/Rc<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nArthrobacter<\/em>\u00a0<\/em>chlorophenolicus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rh2<\/td>\r\nRg3<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nSphingopyxis<\/em>\u00a0<\/em>alaskensis<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRd<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nTerrabacter<\/em>\u00a0<\/em>Ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRd<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nEsteya<\/em>\u00a0<\/em>vermicola<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nFusobacterium<\/em>\u00a0<\/em>K-60<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRb1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nendophytische Pilze GE 17-18<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRb1\/Rb2<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nSulfolobus<\/em>\u00a0<\/em>acidocaldarius<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRb1\/Rb2\/Rb3\/Rc<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nAspergillus<\/em>\u00a0<\/em>niger<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
CK<\/td>\r\nRb1\/Rb2<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nMicrobacteriu<\/em>\u00a0<\/em>esteraromaticum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
C-O<\/td>\r\nRb2<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nCellulosimicrobium<\/em>\u00a0<\/em>Zellulose<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
C-Y<\/td>\r\nRb2<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nTerrabacter ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
C-Mc<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nTerrabacter ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
C-Mc1<\/td>\r\nRc<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nCellulosimicrobium cellulans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
C-Mx<\/td>\r\nRb3<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nTerrabacter ginsenosidimutans<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg2<\/td>\r\nRe<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nMikrobakterium esteraromaticum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg2<\/td>\r\nRe<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nMucilaginibacter<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rg2<\/td>\r\nRe<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nPseudonokardie<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rh1<\/td>\r\nRg1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nMikrobakterium esteraromaticum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rh1<\/td>\r\nRf<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nPyrococcus furiosus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rh1<\/td>\r\nRf<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nAspergillus niger<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rh1<\/td>\r\nRg2<\/td>\r\n\u03b1-L-Rhamnosidase<\/td>\r\nAbsidia<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Rh1<\/td>\r\nR2<\/td>\r\n\u03b2-Xylosidase<\/td>\r\nThermoanaerobakterium<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F1<\/td>\r\nRg1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nFusarium moniliforme<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F1<\/td>\r\nRg1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nPenicillium sclerotiorum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
F1<\/td>\r\nRg1<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nSanguibacter keddieii<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n<\/tbody>\r\n<\/table>\r\n<\/figure>\r\n\r\n\r\n\r\n

G17: Gypenosid XVII; G75: Gypenosid LXXV; C-O: Verbindung O; C-Y: Verbindung Y; C-Mc1: Verbindung Mc1; C-Mc: Verbindung Mc; C-Mx: Verbindung Mx; C-K: Verbindung K.<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n

Die C-6- und C-20-Zuckergruppen in Triol-Ginsenosiden k\u00f6nnen auch durch Glykosidhydrolasen hydrolysiert werden. Ginsenosid Rg2 kann durch Hydrolyse von C-20-Glukose im Re-Molek\u00fcl durch Glykosidase gewonnen werden. Die rekombinante Glucosidase, die aus Microbacterium esteraromaticum, Mucillaginibacter und Pseudonocardia geklont wurde, kann nicht nur Ginsenosid Re in Rg2 umwandeln, sondern auch Ginsenosid Rg1 in Rh1. Glucose, Rhamnose und Xylose au\u00dferhalb der C-6-Position von Ginsenosid Rf, Rg2 und R2 k\u00f6nnen alle zur Herstellung von Rh1 umgewandelt werden. Im Gegensatz zu Ginsenosid Rh1 ist bei Ginsenosid F1 nur eine Glukose an die C-20-Position seines Aglykons gebunden. Die Glucosidase in Fusarium moniliforme, Penicillium sclerotiorum und Sanguibacter keddieii kann die C-6-Glucose von Ginsenosid Rg1 spezifisch hydrolysieren, um Ginsenosid F1 herzustellen.<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n

Glykosidhydrolase wird nicht nur zur Umwandlung und Herstellung aktiver seltener Ginsenoside verwendet, sondern auch zur Hydrolyse und Modifizierung von Saponinen wie S\u00fc\u00dfholz, Sojabohnen und Yamswurzel (Tabelle 2). Die aus Streptococcus LJ-22 und Penicillium purpurogenum Li-3 isolierte und gereinigte Glucuronidase kann Glycyrrhizin hydrolysieren, um Glycyrrhizin in Form von Monoglucurons\u00e4ure zu produzieren, und es entsteht kein Nebenprodukt Glycyrrhetins\u00e4ure. Morana et al. verwendeten Glucuronidase aus Aspergillus niger, um Glycyrrhizin vollst\u00e4ndig zu hydrolysieren und Glycyrrhetins\u00e4ure zu erzeugen. Die aus Aspergillus oryzae isolierte und gereinigte Sojasaponin-Hydrolase kann Sojasaponin I hydrolysieren, um Sojasaponol B zu erzeugen. Eine neue Sojasaponin-Hydrolase in Neocosmospora vasinfecta kann Sojasaponin I, II und III in Sojasaponin B umwandeln, was ein wirksames Mittel zur Herstellung von Sojasaponin mit Antioxidationswirkung und Blutfettregulierung darstellt. Unter den Steroidsaponinen ist die Erforschung und der Vergleich der Hydrolysemodifikation der Zuckerkette von Dioscin systematisch. Inoue et al. isolierten und reinigten eine Glucosidase aus Costus speciosus, die das urspr\u00fcngliche Diosgenin hydrolysieren kann, um Diosgenin herzustellen. Liu et al. isolierten, reinigten und klonierten aus Aspergillus oryzae eine rekombinante Dioscin-Hydrolase, die die Glucosyl- und \u03b1-1,4-Rhamnosylgruppen in Dioscin hydrolysieren kann, um Dioscin III zu erzeugen. Die von Feng et al. aus Curvularia lunata isolierte und gereinigte \u03b1-L-Rhamnosidase kann die \u03b1-1,2-Rhamnosylgruppe in Dioscin unter Bildung von Dioscin V hydrolysieren. Qian et al. isolierten und reinigten eine \u03b1-L-Rhamnosidase aus frischer Rinderleber, die die beiden \u03b1-1,2- und \u03b1-1,4-Rhamnosylgruppen in Diosgenin unter Bildung einer Glucosegruppe hydrolysieren kann. -Diosgenin. Fu et al. isolierten und reinigten Diosgenin-Hydrolase aus Absidia, die Diosgenin vollst\u00e4ndig zu Diosgenin hydrolysieren kann.<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n

Tabelle 2. Biotransformation von anderen Saponinen durch Glycosidase<\/h4>\r\n\r\n\r\n\r\n
\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n\r\n
Produkt<\/td>\r\nSubstrat<\/td>\r\nReaktion<\/td>\r\nOrganismus<\/td>\r\n<\/tr>\r\n
GAMG<\/td>\r\nGlycyrrhizin<\/td>\r\n\u03b2-Glucuronidase<\/td>\r\nStreptokokkus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
GAMG<\/td>\r\nGlycyrrhizin<\/td>\r\n\u03b2-Glucuronidase<\/td>\r\nPenicillium purpurogenum<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Glycyrrhetins\u00e4ure<\/td>\r\nGlycyrrhizin<\/td>\r\n\u03b2-Glucuronidase<\/td>\r\nAspergillus niger<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Sojasapogenol B<\/td>\r\nSojasaponin I<\/td>\r\nSojabohnen-Saponin-Hydrolase<\/td>\r\nAspergillus oryzae<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Sojasapogenol B<\/td>\r\nSojasaponin<\/td>\r\nSojabohnen-Saponin-Hydrolase<\/td>\r\nNeocosmospora vasinfecta<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Dioscin<\/td>\r\nProtodioscin<\/td>\r\n\u03b2-Glucosidase<\/td>\r\nCostus speciosus<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Progenin III<\/td>\r\nProtodioscin<\/td>\r\nProtodioscin-Glykosidase<\/td>\r\nAspergillus oryzae<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Progenin V<\/td>\r\nDioscin<\/td>\r\n\u03b1-L-Rhamnosidase<\/td>\r\nCurvularia lunata<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Diosgenyl-Glucosid<\/td>\r\nDioscin<\/td>\r\n\u03b1-L-Rhamnosidase<\/td>\r\nRinderleber<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n
Diosgenin<\/td>\r\nDioscin<\/td>\r\nDioscin-Glykosidase<\/td>\r\nAbsidia<\/em><\/td>\r\n<\/tr>\r\n<\/tbody>\r\n<\/table>\r\n<\/figure>\r\n\r\n\r\n\r\n

GAMG: Glycyrrhetins\u00e4ure-Mono-Glucuronid<\/h4>\n\n\n

A practical sourcing checklist for enzyme, biotech, and food-ingredient topics<\/h2>\n

In enzyme and food-processing projects, the most useful decision frame is usually application fit plus process stability: which ingredient performs under the intended pH, temperature, time, and substrate conditions without creating a downstream quality or compliance problem.<\/p>\n